polβ高表達與食管癌細胞耐藥的相關性
李敏 臧文巧 付慶
【關鍵詞】 DNA聚合酶β; 轉染;食管腫瘤;腫瘤細胞,培養的;抗藥性,腫瘤;四甲基偶氮唑藍
DNA聚合酶beta (polymerase beta gene,polβ)廣泛存在于哺乳動物細胞核內,是一條Mr為39×103的單肽鏈小分子蛋白,由355個氨基酸組成,是目前已知的最小的DNA聚合酶. 在堿基切除修復,DNA復制,跨損傷合成中發揮重要作用,還與基因組不穩定性有關[1-4 ]. 近年來的研究表明在多種腫瘤組織及腫瘤細胞株內polβ mRNA的表達都明顯增加[5-6]. polβ與腫瘤細胞耐藥性的關系也逐漸引起人們的注意. 本實驗通過研究人食管癌順鉑(concentration of cisplatin, cDDP)耐藥細胞系Ec9706/cDDP和穩定高表達人野生型polβ的Ec9706細胞中polβ的表達水平及其對抗腫瘤藥cDDP的敏感性,旨在進一步探討polβ高表達與食管癌細胞耐藥的相關性.
1材料和方法
1.1材料
人食管癌細胞株Ec9706由中國醫學科學院腫瘤研究所提供;cDDP山東齊魯藥業股份有限公司產品;RPMI 1640培養液Gibco/ BRL公司生產;四甲基偶氮唑藍(MTT)為美國Sigma產品;pEGFPC3 (Clonetech公司);野生型人polβ重組綠色熒光蛋白表達載體pEGFPAC3(微生物學與免疫學教研室趙國強教授惠贈);G418(寶生物公司);6TG (美國Sigma公司);LipofectamineTM 2000(Invitrogen公司);引物2對,由上海生工公司合成:polβRNA檢測引物:上游5′TGTTTGCCAGCTTCCC AGTA3′,下游5′CTCCA GTGACTCCCAAGGGA3′,擴增長度206 bp;βactin引物:上游5′TC AAGATCATTGCTCCTCCTGA3′,下游5′CTCGTCATACTCCTGCTT GCTG 3′,擴增長度113 bp.
1.2方法
1.2.1cDDP誘導耐藥細胞系Ec9706/cDDP的建立
采用cDDP中等濃度、間歇作用方法建株. 以終濃度為2 mg/L的cDDP培養基沖擊對數生長期的Ec9706細胞,48 h后棄去含藥培養基,PBS洗3次,換新鮮培養基. 1~2 d換液1次,洗去死亡細胞,待形成細胞克隆時傳代,恢復穩定生長后提高cDDP濃度再次沖擊,如此反復作用直至細胞可在濃度為0.5 mg/L的cDDP培養液中維持培養. 1.2.2穩定高表達人野生型polβ的Ec9706細胞系的建立
取對數生長期Ec9706細胞以2.5×105個/孔接種于6孔板,待細胞融和度達60%~70%時,以正常Ec9706細胞作對照,分組轉染pEGFPC3 (空質粒)和pEGFPAC3,按轉染試劑LipofectamineTM 2000操作說明書進行. 4~6 h后,棄轉染液換2 mL含10 mL/L胎牛血清的培養液繼續培養. 48 h后以含750 mg/L G418的培養液篩選,約14 d后對照Ec9706細胞全部死亡,轉染組改用含200 mg/L G418的培養液,陽性克隆擴大培養后,建立穩定傳代轉染細胞系. 轉染pEGFPC3, pEGFPAC3的細胞分別用Ec9706C3, Ec9706AC3表示.
1.2.3細胞形態學觀察普通倒置顯微鏡下觀察各組細胞形態,熒光顯微鏡觀察轉染后細胞綠色熒光.
1.2.4RTPCR檢測polβ mRNA的表達取細胞各1瓶,按Trizol試劑盒說明書抽提細胞總RNA,逆轉錄后PCR擴增. PCR反應體系30 μL: 10×buffer 3 μL,dNTP 2.4 μL,上下游引物各0.5 μL,Taq酶0.5 U,逆轉錄產物5 μL. PCR反應條件: 94℃預變性5 min,94℃變性45 s,55℃退火45 s,72℃延伸60 s,35個循環后,72℃延伸5 min. 15 g/L瓊脂糖凝膠電泳. SYNGENE凝膠分析系統軟件分析電泳結果,用polβ與β actin積分吸光度值的比值表示polβ基因的相對表達水平.
1.2.5MTT法測細胞對cDDP敏感性的變化常規MTT法檢測,酶標儀以波長550 nm測各孔A值,計算相對抑制率(%)=(1-加藥孔A值/對照孔A值)×100%,用IC50計算器軟件計算50%細胞生長抑制所需的藥物濃度( IC50),耐藥指數(RI) =待測細胞IC50/ Ec9706細胞IC50.
統計學處理: 用SPSS 10.0統計軟件處理數據,數據以x±s表示,t檢驗,α=0.05.
2結果
2.1各組細胞形態
經過9 mo的體外誘導篩選獲得了在含0.5 mg/L的cDDP培養液中生長良好的耐藥細胞系Ec9706/cDDP. 誘導過程中在加入cDDP后24 h倒置顯微鏡下可見大部分細胞因死亡而漂浮起來,培養液略渾濁,殘留貼壁細胞發生明顯改變,大小不均勻,有巨細胞產生,形態不規則,細胞突起及部分細胞質中黑色顆粒較多,生長緩慢,于20 d左右可形成細胞克隆,傳代后逐漸接近原來細胞形狀(圖1). 此外,倒置顯微鏡下觀察轉染前后細胞形態無明顯差異,均呈多角形或圓形;在熒光顯微鏡488 nm波長下Ec9706AC3與Ec9706C3細胞呈現綠色熒光,而對照Ec9706細胞則無熒光.
2.2RTPCR結果
耐藥細胞Ec9706/cDDP與親本細胞RTPCR后電泳結果見圖2. 經灰度掃描后兩種細胞內polβ mRNA與βactin相比其相對表達水平分別為0.49±0.09,0.81±0.16,Ec9706/cDDP中polβ的表達高于親本細胞(P<0.05),是親本細胞的1.65倍;轉染細胞RTPCR后電泳結果見圖3. 經灰度掃描后Ec9706,Ec9706C3及Ec9706AC3細胞內polβ mRNA與βactin相比,其相對表達水平分別為0.52±0.13,0.48±0.11,1.21±0.15,表明Ec9706AC3細胞內polβ的表達高于Ec9706及Ec9706C3細胞(P<0.05),是Ec9706細胞的2.33倍;而Ec9706C3細胞內polβ的表達與Ec9706細胞相比較差異無統計學意義(P>0.05). A: 正常不加藥的Ec9706細胞;B: 加藥后24 h細胞;C: 加藥后20 d左右形成的克?。籇: Ec9706/cDDP細胞.
2.3各組細胞對cDDP的敏感性
經MTT法檢測,人食管癌cDDP耐藥細胞系Ec9706/cDDP的耐藥指數為15.70. 而Ec9706AC3對cDDP的耐藥指數為1.78,與Ec9706相比對cDDP的敏感性顯著降低(P<0.05),而對照轉染空質粒的Ec9706C3的IC50是Ec9706的0.97倍,與Ec9706相比對cDDP的敏感性無明顯改變(P>0.05).
3討論
腫瘤細胞的耐藥機制有多種,包括藥物的蓄積降低、細胞解毒功能的增強、藥物靶蛋白(如拓撲異構酶TPO)量或活性的改變等. 通常MRP, mdr1, GST, TPO與二氫葉酸還原酶等基因的異常表達與腫瘤的耐藥關系密切[7-8]. 近年來,DNA修復能力增強(如polβ表達增強)與耐藥性的關系也逐漸引起人們的注意. polβ于1971年由Weissbach等[9]在牛胸腺細胞中發現,通常情況下在體內恒定低水平表達,主要參與DNA修復,在堿基切除修復(base excision repair, BER)的過程中填補單核苷酸缺口,堿基摻入過程有很高的錯誤率,體外DNA聚合反應中單堿基錯誤摻入率為1/1000~1/6600,是哺乳動物體內復制保真度最低、最不精確的一種DNA聚合酶[10-11]. 細胞為了正常分化以及DNA的正常復制與修復,polβ在細胞內的表達水平必須維持到一個適量的穩定水平. 當polβ高表達時,可導致細胞自身突變率增加、遺傳不穩定性的發生以及對一些抗癌藥物產生耐受. 有學者報導,將表達polβ的質粒轉染如中國倉鼠卵巢細胞中發現轉染細胞對cDDP等化療藥物的敏感性降低[3]. 對cDDP耐藥的卵巢癌細胞株中polβ的表達比親本細胞增加了8倍[12]. 本研究誘導建立了人食管癌cDDP耐藥細胞系Ec9706/cDDP,該細胞耐藥指數達15.70,細胞內polβ表達是親本食管癌細胞Ec9706的1.65倍;同時采用脂質體轉染法將人野生型polβ重組綠色熒光蛋白表達載體pEGFPAC3導入食管癌細胞Ec9706后,其polβ表達是Ec9706細胞的2.33倍,對cDDP的敏感性降低,耐藥指數為1.78. 這些均表明polβ的高表達與腫瘤細胞對cDDP等的耐藥有關,polβ的高表達可引起耐藥性的產生,耐藥細胞中polβ的表達也會增高. 同時,研究發現轉染有polβ表達載體的Ec9706AC3細胞內polβ的表達高于耐藥細胞Ec9706/cDDP,而其耐藥指數卻低于Ec9706/cDDP細胞,說明體外誘導產生的耐藥細胞Ec9706/cDDP的耐藥機制有除polβ外其它機制的參與.