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關(guān)于外排泵msrA在表皮葡萄球菌生物被膜對紅霉素耐藥性中的作用

賈寧

【摘要】 目的:探討外排泵msrA在表皮葡萄球菌生物被膜對紅霉素耐藥性中的作用. 方法:從野生菌株中克隆msrA基因全長,并通過穿梭載體pBT2電轉(zhuǎn)化至限制缺陷菌株金黃色葡萄球菌RN4220,提取質(zhì)粒后再轉(zhuǎn)化S.epidermidis 1457(ica+, 產(chǎn)膜陽性菌),得到S. epidermidis 1457msrA. 實(shí)時(shí)熒光RTPCR檢測S. epidermidis 1457msrA和野生株S68浮游菌、生物被膜內(nèi)細(xì)菌紅霉素作用24 h前后msrA mRNA的表達(dá). 結(jié)果:表葡膜內(nèi)菌msrA的表達(dá)在紅霉素(10倍MIC)作用前后未見統(tǒng)計(jì)學(xué)差異. 結(jié)論:提示膜內(nèi)菌對紅霉素耐藥性的增加可能與外排泵基因的上調(diào)無關(guān). 【關(guān)鍵詞】 表皮葡萄球菌 物被膜 紅霉素 耐藥性 0 引言 表皮葡萄球菌(簡稱表葡菌)引發(fā)的醫(yī)院感染已得到人們的日益關(guān)注,雖然表葡菌分泌的毒性因子較金黃色葡萄球菌少,但其粘附在多聚材料上,形成生物被膜而引發(fā)的感染卻呈現(xiàn)慢性、持續(xù)性、反復(fù)性和難治性的特點(diǎn)[1]. 生物被膜的產(chǎn)生使膜內(nèi)菌對抗生素的耐藥性比浮游菌增加10~1000倍, 其引發(fā)的感染常常只有移走植入物才能控制[2],但其對抗生素的耐藥機(jī)制目前還不十分清楚. 外排泵msrA是浮游葡萄球菌對MLSB類抗生素耐藥的主要機(jī)制之一, 我們探討外msrA在生物被膜內(nèi)細(xì)菌對紅霉素耐藥性中的作用如下: 1 材料和方法 1.1 限制缺陷型菌株 Staphylococcus aureus RN4220,Staphylococcus epidermidis 1457(產(chǎn)生物被膜, ica+, 紅霉素MIC 0.25 mg/L)和穿梭載體pBT2由美國Micheal Otto教授惠贈(zèng);野生株S68(產(chǎn)生物被膜,msrA+, 紅霉素耐藥MIC 32 mg/L). 根據(jù)msrA全長(GenBank No.X52085),設(shè)計(jì)引物并在兩端加SalⅠ和BamHⅠ酶切位點(diǎn)(F 5′ AAAAGTACT gat ctt tgt act tag aga tat3′;R 5′ CGGGATCC gat cgg tta tgg tac tat tg3′),以菌株S68為模板擴(kuò)增msrA, PCR反應(yīng)條件:94℃ 5 min,94℃ 1 min,46℃ 1 min,72℃ 90 s,32個(gè)循環(huán)后,72℃ 7 min. PCR產(chǎn)物凝膠純化后,連于pMD18T載體并測序驗(yàn)證. 將pMD18TmsrA質(zhì)粒和pBT2質(zhì)粒用SalⅠ和BamHⅠ雙酶切后,將長度為2.0 kb的msrA片段和6.9 kb的pBT2質(zhì)粒DNA片段連接后,轉(zhuǎn)化入E. coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞,用含Amp(100 mg/L)和Em(20 mg/L)的LB瓊脂平板篩選,挑選菌落增菌提取質(zhì)粒后,用SalⅠ和BamHⅠ雙酶切鑒定;同時(shí)PCR擴(kuò)增msrA鑒定. DL2000 DNA maker, Taq酶(DRR001A)和PCR試劑均購自TaKaRa公司. 1.2.1 S. epidermidis 1457pBT2/msrA株的構(gòu)建 取S. epidermidis 1457新鮮增菌液1 mL接種于25 mL B medium(含蛋白胨10 g/L,酵母提取物5 g/L,葡萄糖1 g/L,氯化鈉5 g/L,磷酸氫二鉀1 g/L) 37℃震蕩培養(yǎng)至A600 nm 0.8. 收集細(xì)菌用滅菌三蒸水和100 mL/L甘油溶液洗滌后,用800 μL甘油(100 mL/L)溶液懸起,以每管70 μL分裝于滅菌Eppendorf管,-70℃保存. 取-70℃保存的金黃色葡萄球菌RN4220感受態(tài)細(xì)胞于室溫融化. 每管加入重組質(zhì)粒pBT2+msrA 6 μL(100 mg/L),輕輕混勻,室溫放置30 min,將細(xì)菌轉(zhuǎn)入0.2 cm電轉(zhuǎn)杯,電擊1次(電壓2 kV,電容25 μF,電阻100 Ω),通電時(shí)間約為2.4 ms. 迅速加入0.9 mL B medium懸起細(xì)菌, 37℃震蕩培養(yǎng)3 h,取100 μL涂于含 Cm (20 mg/L)的B medium瓊脂平板,37℃倒置培養(yǎng)24 h后,挑取克隆,接種到5 mL含抗生素的LB液體培養(yǎng)基中,振搖培養(yǎng)12~16 h,用Qiagen質(zhì)粒抽提試劑盒提取質(zhì)粒,SalⅠ和BamHⅠ酶切鑒定. 采用Qiagen plasmid midi kit從金黃色葡萄球菌RN4220中提取50~100 μg質(zhì)粒,按上述方法電轉(zhuǎn)化S. epidermidis 1457感受態(tài)細(xì)胞,用含Cm (10 mg/L)和Em(10 mg/L)的B medium瓊脂平板篩選陽性克隆. 1.2.2 S. epidermidis 1457msrA的鑒定 提取質(zhì)粒用SalⅠ和BamHⅠ雙酶切鑒定. 提取基因組DNA,PCR鑒定: msrA(1887 bp)引物同前和 icaA(814 bp)引物為:5′GACCTCGAAGTCAATAGAGGT3′,5′CCCAGTATAACGTTGGATACC3′. 95℃變性5 min,95℃ 30 s,50℃ 30 s,72℃ 1 min,30個(gè)循環(huán)后,72℃延伸7 min;肉湯稀釋法測量S. epidermidis 1457和S. epidermidis 1457msrA菌株的紅霉素最小抑菌濃度, 按常規(guī)方法操作,標(biāo)準(zhǔn)菌株Staphylococcus epidermidis ATCC12228; 采用KB紙片瓊脂擴(kuò)散法檢測S. epidermidis 1457和S. epidermidis 1457msrA株對氨芐西林、苯唑西林、四環(huán)素、環(huán)丙沙星、慶大霉素、氯霉素的藥物敏感性,根據(jù)抑菌環(huán)直徑的大小按NCCLS(2005)標(biāo)準(zhǔn)判讀. 將S. epidermidi 1457和S. epidermidis 1457msrA株接種于剛果紅 [3] 培養(yǎng)板,檢測其產(chǎn)膜特性. 1.2.3 細(xì)菌生物被膜的形成[4]和實(shí)時(shí)定量RTPCR 將新鮮增菌液稀釋至光密度為0.2(600 nm),取5 μL接種于已置于B medium平板上的0.2 μm聚碳酸酯微孔濾膜上(直徑約25 mm),35℃孵育48 h,濾膜及所生成的生物被膜每隔12 h轉(zhuǎn)移到新的平板上. 聚碳酸酯微孔濾膜(Whatman Inc,USA)購于聯(lián)星生物有限公司,使用前121℃高壓15 min. 生物被膜形成后轉(zhuǎn)移至含紅霉素的B medium平板上(10倍MIC),并在紅霉素作用24 h前后取樣,放入細(xì)菌RNA保護(hù)液(Qiagen)中, 盡快提取總RNA. 將S. epidermidis 1457msrA和S68菌株增菌24 h后的浮游菌和生物被膜紅霉素作用前后樣品,用Qiagen RNeasy mini kit提取總RNA. 使用RNasefree DNase set (Qiagen)去除樣品中的基因組污染. 采用Takara SYBR ExScriptTM RTPCR Kit進(jìn)行實(shí)時(shí)定量PCR檢測浮游菌,膜內(nèi)菌紅霉素作用前后msrA基因的表達(dá),以16S rRNA為內(nèi)對照. 采用DNAstar設(shè)計(jì)引物為:msrA 5′ AAGCCAGTAAAGCTAAACGAAATC 3′,5′ TTTTGATGCACTTAAACGATCTGG 3′;16S rRNA 5′ CCATGTGTAGCGGTGAAATGC 3′,5′ ACATCAGCGTCAGTTACAGACC 3′. 使用1457msrA浮游菌總RNA樣品轉(zhuǎn)錄成cDNA梯度稀釋為100, 10, 1, 0.1, 0.01 ng/L作為標(biāo)準(zhǔn)品,進(jìn)行Real Time PCR反應(yīng),制作16sRNA標(biāo)準(zhǔn)曲線和cDNA梯度稀釋為100, 10, 1, 0.1, 0.01 μg/L作為標(biāo)準(zhǔn)品,制作目的基因的標(biāo)準(zhǔn)曲線. 檢測各標(biāo)本Ct值,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算樣品目的基因的濃度,分別用16S rRNA和1457浮游菌各目的基因表達(dá)量進(jìn)行校準(zhǔn)獲得相對表達(dá)量. 使用沒有逆轉(zhuǎn)錄的反應(yīng)作為對照鑒別是否有基因組污染. 操作時(shí)每份樣品重復(fù)3次. 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理:數(shù)據(jù)用x±s表示,采用CHISS 2004統(tǒng)計(jì)軟件組內(nèi)前后比較采用配對t檢驗(yàn),組間比較采用t(t′)檢驗(yàn). 2 結(jié)果 2.1 重組質(zhì)粒pBT2msrA電轉(zhuǎn)入S.epidermidis 1457 全長msrA(1887 bp)從野生菌株S68中擴(kuò)增后,克隆入pMD18T,測序驗(yàn)證其序列的正確性;將序列正確的msrA克隆入pBT2(6970 bp)載體,篩選出的陽性克隆質(zhì)粒經(jīng)SalⅠ和BamHⅠ雙酶切,分別得到6970 bp和1887 bp的DNA片段,證明pBT2msrA重組質(zhì)粒構(gòu)建成功(圖1). 首先將重組質(zhì)粒電轉(zhuǎn)化入金黃色葡萄球菌RN4220,經(jīng)SalⅠ和BamHⅠ雙酶切,0.8 g/L瓊脂糖電泳證明正確后,從RN4220中抽提高濃度的質(zhì)粒電轉(zhuǎn)入S.epidermidis 1457,經(jīng)抽提質(zhì)粒酶切、電泳證明分別為6970 bp和1887 bp片段(圖2). KB紙片瓊脂擴(kuò)散法檢測其對氨芐西林、苯唑西林、四環(huán)素、環(huán)丙沙星、慶大霉素、氯霉素藥物均敏感,與S.epidermidis 1457相同;對紅霉素耐藥,最小抑菌濃度為16 mg/mL; msrA(1887 bp)和icaA PCR(814 bp)擴(kuò)增陽性(圖3);剛果紅培養(yǎng)均產(chǎn)黑色帶干結(jié)晶體菌落. 2.2 實(shí)時(shí)熒光定量RTPCR 表葡菌1457msrA和野生株S68膜內(nèi)菌紅霉素作用前后msrA表達(dá)未見統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05, 表1).表1 實(shí)時(shí)熒光定量RTPCR檢測表葡菌1457和S68 msrA表達(dá)水平aP<0.05 vs膜內(nèi)菌EM作用前.

[2] Dobinsky S, Kiel K, Rohde H. et al. Glucoserelated dissociation between icaABCD transcription and biofilm expression by Staphylococcus epidermidis: Evidence for an additional factor required for polysaccharide intercellular adhesion synthesis [J]. J Bacteriol, 2003,185(9):2879-2886.

[3] 賈 寧,徐志凱,索繼江,等. 引發(fā)醫(yī)院感染表皮葡萄球菌生物被膜的檢測[J]. 微生物學(xué)通報(bào), 2006,33(3):96-99.

[4] Walters III MC, Roe F, Bugnicourt A,et al. Contributions of antibiotic penetration, oxygen limination and low metabolic activity to tolerance of Pseudomonas aeruginosa biofilms to ciprofloxacin and tobramycin [J]. Antimicrob Agent Chemother, 2003,47(1):317-323.

[5] Otto M, Gotz F. ABC transporter of staphylococci [J]. Res Microbiol, 2001,152:351-356.

[6] Horsburgh MJ, Arish JL, White IJ, et al. Sigma(B) modulates virulence determinant expression and stress resistance: Characterization of a functional rsbU strain derived from Staphylococcus aureus 83254. [J] J Bacteriol, 2002,184(35):5457-5467.

[7] MariaLitran T, Allison DG, Gilbert P, et al. An evaluation of the potential of the multiple antibiotic resistance operon(mar) and the multidrug efflux pump acrAB to moderate resistance towards ciprofloxacin in Escherichia coli biofilms [J]. J Antimicrob Chemother, 2000,45:789-795.

[8] Podbielski A, Kreikemeyer B. Cell density-dependent regulation: Basic principles and effects on the virulence of Grampositive cocci. [J] Int J Infect Dis, 2004,8(2):81-95.

[9]Andreas P, Bernd K. Cell densitydependent regulation: Basic principles and effects on the virulence of Grampositive cocci [J]. Int J Infect Dis, 2004,8(2):81-95.

[10] Michael Otto. Quorumsensing control in Staphylococci  a target for antimicrobial drug therapy?[J] FEMS Microbiol Lett, 2004,241:135-141.

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